jueves, 1 de diciembre de 2016

Práctica: Observación de mitosis en meristemo de raíz de cebolla

Objetivo.
Hacer una preparación microscópica de células meristemáticas de la raíz de cebolla para localizar y diferenciar con el microscopio las distintas fases de la mitosis o cariocinesis.

Material.
Cebollas, microscopio, portaobjetos, cubreobjetos, lanceta, aguja enmangada, pinzas de madera, pinzas de punta fina, palillos, mechero, tijeras, papel de filtro, vaso de precipitados, vidrio de reloj, orceína A y orceína B.

Introducción:

La división celular es el fenómeno por el que una célula origina dos células hijas, cada una de las cuales recibe idéntica información genética. Consta de dos etapas: la cariocinesis o mitosis que asegura el reparto equitativo del material hereditario y la citocinesis o división del citoplasma.
La mitosis consta de las siguientes etapas: profase, metafase, anafase y telofase.
Protocolo:

Preparación previa. Tres o cuatro días antes de hacer la práctica se pone un bulbo de cebolla en un vaso de precipitados lleno de agua, de tal manera que la parte inferior del mismo esté en contacto con el agua. Al cabo de esos tres o cuatro días se habrán formado numerosas raicillas, cuyos ápices se utilizarán en esta práctica. Conviene realizar la práctica cuando las raicillas todavía no han crecido demasiado.

1. Con una tijera se corta el extremo de varias raicillas, procurando que su longitud sea de unos 2 a 3 mm., ya que es en esta zona de la raíz donde se encuentran las células en división.

2. Se depositan los trozos de raíz en un vidrio de reloj, en el que previamente se han vertido de 2 a 3 ml de orceína A, cuya función es la de reblandecer las membranas celulares.

3. Con ayuda de unas pinzas de madera se calienta el vidrio de reloj a la llama del mechero durante 8 minutos, teniendo gran cuidado de que no entre en ebullición (si es necesario se retirará el vidrio de reloj para que no se produzca la ebullición); el calentamiento termina cuando se observa la emisión de unos tenues vapores.

4. Se coge con las pinzas de punta fina uno de los extremos (ápice) de la raíz y se coloca en un portaobjetos añadiendo una gota de orceína B y se deja actuar durante un minuto. La función de la orceína B es la de completar el proceso de teñido de los cromosomas.
5. Hacer un squash:
Sobre el cubreobjetos se colocan unas tiras de papel de filtro, más o menos 5 o 6 trocitos, y luego se presiona suavemente con la yema del dedo pulgar haciendo un giro de más o menos 60º, para así conseguir que las células queden en un solo plano y se elimine el exceso de colorante.
Sin necesidad de retirar el papel de filtro se golpea, también suavemente, con el extremo romo de una aguja enmangada o bien con el extremo plano de un lápiz para completar la disgregación de las células meristemáticas.
6. Se observa la preparación con el microscopio empezando con el objetivo de menor aumento para luego utilizar los de mayor aumento.


martes, 15 de noviembre de 2016

OBSERVACIÓN DE CÉLULAS DE LA EPIDERMIS VEGETAL

OBJETIVO:
Observación de células y utilización de las técnicas de tinción y manejo del microscopio.
MATERIAL:
·                     Pinzas 
·         Bisturí
·         Aguja enmangada
·         Microscopio                                                 
·         Vidrio de reloj                                                          
·         Portaobjetos                                                 
·         Cubreobjetos                                    
·         Papel de filtro                                              
·         Colorante (Verde de metilo)
·         Material de estudio: bulbo de cebolla

  • DESARROLLO DE LA PRÁCTICA:

Con ayuda  del bisturí  cortamos un rectángulo de la hoja de la cebolla. Ayudándonos de unas pinzas tiramos suavemente de una lámina muy fina que se encuentra en la cara interna de la muestra. Una vez extraída  la ponemos en un vidrio de reloj y lo mezclamos con verde de metilo, esperamos 5min y lo lavamos en el portaobjetos sujetándolo con las pinzas para que no se caiga. A continuación, cubrimos la muestra con un cubreobjetos y la observamos en el microscopio. Comenzamos la observación de la muestra utilizando el objetivo de menor aumento.

martes, 1 de noviembre de 2016

PRACTICA: Reacción de Fehling y Lugol


Los azúcares son hidratos de carbonos generalmente blancos y cristalinos, solubles en agua y con un sabor dulce. Esta prueba se utiliza para el reconocimiento de azúcares reductores. El poder reductor que pueden presentar los azúcares proviene de su grupo carbonilo, que puede ser oxidado a grupo carboxilo con agentes oxidantes suaves. Si el grupo carbonilo se encuentra combinado no
puede presentar este poder reductor.


MATERIAL:
-gradilla
-tubos de ensayo 7
-pipeta pasteur
- pipetas 5
-vasos de precipitado 3
-mechero
-Reactivos: Fehling A y B, reactivo de lugol

DESARROLLO REACCIÓN DE FHELING:
se preparan tres disoluciones, una con azúcar de sobre, otra con harina o papas y otra con glucosa o zumo de uvas o pasas.
Se vierten 2ml de cada solución en un tubo de ensayo diferente y se le añaden 2ml de fehling A y otros 2ml de Fehling B. Se mezcla y a continuación se calienta el tubo de ensayo suavemente en el mechero y evitando orientar la boca del tubo hacia una persona por el riesgo a salpicaduras.
En un tubo de ensayo diferente se añaden 2ml de la solución de sacarosa y a continuación, utilizando la pipeta pasteur, se dejan caer unas gotas de HCl, se dejan transcurrir unos minutos y luego se añaden 2ml de Fehling A y otros 2ml de Fehling B. Luego como en los tubos anteriores, se calienta suavemente a la llama del mechero.
Cuando la reacción de Fehling da positivo, el color del tubo pasa de azul intenso a rojo ladrillo.


DESARROLLO REACCIÓN DE LUGOL:

Se ponen  2ml de cada una de las soluciones en tubos de ensayo diferente. A continuación, utilizando la pipeta pasteur, se dejan caer una gotas de lugol en cada tubo y se agita. Si la reacción de lugol da positivo la muestra tiene que girar del amarillo al azul.

martes, 18 de octubre de 2016

LA ÓSMOSIS EN CÉLULAS VEGETALES

MATERIAL:
·         Bisturí
·         Pinzas
·         Vidrio reloj
·         Portaobjetos
·         Cubreobjetos
·         Microscopio
·         Agua destilada
·         Solución salina concentrada
·         Material de estudio: pétalos rojos de rosa

TÉCNICA:
Con la ayuda del bisturí dibuja un rectángulo en la parte del haz del pétalo, pero sin llegar  a atravesarlo. A continuación, con la ayuda de las pinzas intentas extraer la capa superior del pétalo. Una  vez extraído lo colocas sobre un porta y añades una gota de agua, el agua te ayudará a extender la muestra sin que queden arrugas. Finalmente colocas un cubreobjetos sobre la muestra.
Ahora repites de nuevo la operación anterior pero con la diferencia de que añadirás sobre la muestra una gota de solución salina concentrada.
Cuando ya tengas listas ambas muestras se llevan al microscopio.


OBSERVACIÓN:
1.     Haz una representación de ambas células
2.     Compara ambas muestras y describe la principal diferencia observada

3.     Da una explicación del fenómeno observado

lunes, 18 de abril de 2016

miércoles, 9 de marzo de 2016

MICORRIZAS Y LÍQUENES

Ya tienen colgada la actividad sobre Micorrizas y Líquenes, dos asociaciones entre hongos y otros seres vivos muy interesante. La fecha de entrega de la actividad será el viernes 18 de marzo como fecha tope.

Charla vulcanismo reciente en Canarias

 El pasado jueves pudimos disfrutar de una charla en nuestro centro sobre las erupciones de La Restinga de 2010 y la actual erupción de La P...